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Utilisation d'un tensioactif non ionique dérivé de polyols en tant qu'agent
stimulateur de la croissance végétale ou en tant qu'adjuvant
L'invention concerne l'utilisation d'au moins un tensioactif non ionique
dérivé de
polyols en tant qu'agent stimulateur de la croissance végétale, notamment vis-
à-vis de la germination et/ou de la croissance racinaire (y inclus
l'architecture
racinaire).
L'invention concerne également l'utilisation d'au moins un tensioactif non
ionique dérivé de polyols en tant qu'adjuvant pour produit phytosanitaire.
De préférence, ledit dérivé de polyols est un dérivé de sucre.
La lutte chimique quasi généralisée exerce une pression sur l'environnement et
présente ses limites d'application avec l'apparition de résistance des
bioagresseurs, de la pollution et des effets nocifs fortement soupçonnés sur
la
santé humaine.
.. La maîtrise des intrants au niveau d'une exploitation agricole est d'abord
un
enjeu économique. Leur utilisation doit tenir compte de leur efficacité, qui
diminue lorsqu'on approche de l'optimum jusqu'à s'annuler, pour s'inverser au-
delà d'un certain seuil, ainsi que de leur coût qui ampute la marge de
l'exploitation dans un contexte de concurrence sur les marchés.
Au-delà d'être un enjeu économique, c'est également un enjeu
environnemental, certaines formes d'agriculture, comme l'agriculture durable,
cherchent à économiser les intrants sur tous les postes. Tandis que
l'agriculture biologique, par le cahier des charges interdit les intrants
chimiques
sans prendre en compte les intrants énergétiques.
.. La pénétration des intrants (i.e. substances exogènes) est limitée au
travers
des épithéliums végétaux, de par leur structure. Ceci conduit le plus souvent,
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en réponse, à une exposition accrue à ces substances (plus en quantité ou
plus en fréquence).
La présente invention permet d'apporter une solution à ce problème grâce à
l'utilisation d'au moins un tensioactif non ionique dérivé de polyols comme
agent stimulateur de la croissance végétale.
Dans le cadre de la présente invention, on entend par agent stimulateur de
la
croissance végétale , un composé qui exerce une activité stimulatrice sur les
graines et/ou les racines d'un végétal.
Cette définition vise des applications spécifiques, parmi lesquelles on peut
.. citer, par exemple, le fait de favoriser la germination, l'élongation
racinaire, la
formation de radicelles, l'ancrage vertical de la racine ou la levée de
dormance.
Ces applications sont des applications bien spécifiques qui sont susceptibles
d'entrer dans la définition générale d'un biostimulant ou biostimulant
végétal tel que défini conformément à l'étude commanditée par le Centre
d'Études et de Prospective du Ministère de l'Agriculture, de l'Agroalimentaire
et
de la Forêt (MAAF) et financée par le MAAF dans le cadre du programme 215
(Marché n SSP-2013-094, Rapport final ¨ Décembre 2014) intitulée Produits
de stimulation en agriculture visant à améliorer les fonctionnalités
biologiques
des sols et des plantes ¨ Étude des connaissances disponibles et
recommandations stratégiques , mais en sont distinctes.
Un biostimulant est également défini comme : Un matériel qui contient une
(des) substance(s) et/ou micro-organisme(s) dont la fonction, quand appliqué
aux plantes ou à la rhizosphère, est de stimuler les processus naturels pour
améliorer/avantager l'absorption des nutriments, l'efficience des nutriments,
la
tolérance aux stress abiotiques, et la qualité des cultures, indépendamment du
contenu en nutriments du biostimulant. (EBIC, 2014).
Or, ces définitions générales de biostimulant englobent la stimulation de
propriétés de résistance aux stress abiotique(s). De même, les produits de
biocontrôle concernent notamment la protection des plantes vis à vis des
stress
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biotiques. Or, ces applications sur les stress biotiques et/ou abiotiques sont
en
dehors du champ de l'invention.
L'invention a donc pour objet l'utilisation d'au moins un tensioactif non
ionique
dérivé de polyols comme agent stimulateur de la croissance végétale exerçant
-- une activité sur les graines et/ou les racines d'un végétal.
Dans un aspect préféré qui s'applique à tous les aspects de l'invention
décrits
ci-après, ledit dérivé de polyols est un dérivé de sucre.
Avantageusement, ledit tensioactif non ionique dérivé de polyols stimule ou
favorise la germination et/ou la croissance racinaire et/ou l'ancrage vertical
des
-- racines d'un végétal.
Au sens de la présente description, on entend par les graines , une ou
plusieurs graine(s), et par les racines , une ou plusieurs racine(s).
Par favoriser la croissance racinaire , on entend que ledit tensioactif non
ionique dérivé de polyols stimule ou favorise l'élongation racinaire et/ou la
-- formation des radicelles.
Avantageusement, on a également trouvé que l'application d'au moins un
tensioactif non ionique dérivé de polyols peut permettre une élongation
racinaire, couplée à un ancrage vertical des racines.
Sans vouloir être lié par un mécanisme d'action, on peut émettre l'hypothèse
selon laquelle cette croissance racinaire (y inclus la modification de
l'architecture racinaire) peut favoriser la production d'auxine (phytohormone
impliquée dans les processus de division, d'élongation et de différenciation
chez les plantes) et faciliter son transport dans l'apex de la plante,
entrainant
un meilleur ancrage de la plante au sol. De ce fait, la plante peut bénéficier
-- d'une plus grande quantité d'eau et d'une réserve de nutriments plus
importante, ce qui améliore également sa croissance.
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On a également trouvé que l'utilisation d'au moins un tensioactif non ionique
dérivé de polyols en tant qu'agent stimulateur de la croissance végétale selon
l'invention, permettait d'améliorer l'efficience des nutriments, c'est à dire
l'utilisation des nutriments par la plante.
Cette utilisation permet également d'améliorer le rendement des végétaux à
graines ou à fruits, le rendement étant calculé par le ratio du poids de
graines
ou fruits récoltées sur la surface semée.
En effet, ces activités de stimulation ou d'amélioration peuvent être liées,
notamment, à la croissance racinaire, et en particulier à la formation des
radicelles et/ou à l'ancrage vertical des racines (architecture racinaire).
Ces
phénomènes permettent à la plante d'aller chercher des nutriments, en
particulier les minéraux, dans des parties profondes, notamment les parties
dures, du sol, et/ou d'accumuler des réserves de nutriments nécessaires au
développement des graines et/ou des fruits.
La demande DE3234610 décrit l'utilisation de dérivés de glycérol comme
agents de régulateurs de croissance végétale. Cependant, la demande
DE3234610 ne décrit pas de tensioactif non ionique dérivé de sucre.
La demande EP1570735 décrit une composition comprenant l'un quelconque
des composés organiques 1), 2) et 3) définis au paragraphe [0011], et
notamment un dérivé de glycérol 3), comme agent de promotion de la
croissance des plantes. Cet agent de promotion est combiné, notamment, avec
un engrais, un tensioactif qui peut être non-ionique (paragraphe [0043]) et un
chélatant. Comme indiqué au paragraphe [0042], lesdits tensioactifs sont
utilisés comme additif dans la composition (émulsifiant, solubilisant,
dispersant
etc.) et non comme agent présentant une activité vis-à-vis de la croissance de
la plante.
La demande EP2183959 décrit l'utilisation d'un tensioactif à base de dérivé de
sucre pour conférer aux plantes une résistance au(x) stress abiotique(s),
comme le stress salin ou osmotique, la sécheresse, ou la température, ou
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encore une résistance au stress biotique. Les exemples figurant dans cette
demande concernent uniquement la résistance au(x) stress abiotique(s). Dans
les exemples, la tolérance au stress est mesurée par la comparaison du poids
frais des plantes non traitées (contrôle) avec celui des plantes traitées.
Aucune
5 mesure n'est effectuée sur les graines ou le système racinaire. La
demande
EP2183959 ne décrit ni ne suggère une activité stimulatrice spécifique d'un
tensioactif à base de dérivé de sucre vis¨à-vis de la germination et/ou de la
croissance racinaire et/ou de l'ancrage vertical des racines.
L'utilisation du tensioactif non ionique dérivé de polyols est réalisée en
quantité
suffisante pour stimuler ou favoriser la germination et/ou la croissance
racinaire, et/ou l'ancrage vertical des racines d'un végétal.
Le tensioactif non ionique dérivé de polyols est, de préférence, utilisé dans
une
composition sous forme de solution monophasique, ou d'émulsion, en
particulier sous forme de solution monophasique aqueuse. De préférence, ledit
tensioactif non ionique dérivé de polyols est utilisé dans une gamme allant
d'environ 0,01 'Vo à environ 80% en poids de tensioactif non ionique dérivé de
polyols par rapport au poids total de la composition, plus préférentiellement
d'environ 0,05% à environ 30%, et de façon encore plus préférée d'environ
0,5% à environ 3%.
Dans le cadre de la présente invention, les tensioactifs non ioniques dérivés
de
polyols utilisés en tant qu'agent stimulateur de la croissance végétale tel
que
défini plus haut ou en tant qu'agent adjuvant sont, comme indiqué plus haut,
de
préférence des tensioactifs non ioniques dérivés de sucres, et peuvent être
notamment choisis parmi les esters de sucre et d'acide(s) gras, les
alkylmonoglucosides, les alkylpolyglucosides, les esters d'alkylmonoglucoside
et d'acide(s) gras, les esters d'alkylpolyglucoside et d'acide(s) gras et les
N-
alkylglucamides.
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Par sucre , on entend un mono ou polysaccharide, de préférence le
saccharose, le sorbitane, ou le glucose, plus préférentiellement le saccharose
ou le glucose.
Par acide gras , on entend un acide carboxylique comprenant une chaîne
hydrocarbonée saturée ou insaturée dans lequel le nombre d'atomes de
carbone de la chaîne hydrocarbonée, incluant l'atome de carbone de la
fonction acide carboxylique, est compris entre 6 et 26, de préférence entre 8
et
20, plus préférentiellement entre 10 et 18. Avantageusement, l'acide gras est
choisi parmi l'acide stéarique, l'acide laurique, l'acide palmitique, et
l'acide
oléique, de préférence l'acide laurique ou l'acide stéarique.
De préférence, l'ester de sucre et d'acide(s) gras est choisi parmi les esters
de
saccharose, les esters de sorbitane, et les esters de glucose, plus
préférentiellement l'ester de sucre et d'acide(s) gras est choisi parmi le
laurate
de sorbitane, le palmitate de saccharose, le stéarate de glucose, et le
stéarate
de saccharose, de façon encore plus préférée l'ester de sucre et d'acide(s)
gras est le stéarate de saccharose, également appelé sucrose stéarate.
Par un groupement alkyle , on entend une chaîne hydrocarbonée linéaire ou
ramifiée, saturée ou insaturée.
Par alkylmonoglucoside , on entend une molécule formée par la réaction
d'une unité de glucose avec un alcool. De préférence, le groupement alkyle de
l'alcool comprend de 6 à 26 atomes de carbone, plus préférentiellement, de 8 à
20 atomes de carbone, de façon encore plus préférentielle de 10 à 18 atomes
de carbone. Avantageusement, l'alkylmonoglucoside est choisi parmi le
décylglucoside, le laurylglucoside et le cétéaryl glucoside, de préférence,
l'alkylmonoglucoside est le décylglucoside.
Par alkylpolyglucoside , on entend une molécule formée par la réaction de
plusieurs unités de glucose, liées entre elles par une liaison glycosidique,
avec
un alcool. De préférence, l'alkylpolyglucoside est constitué de 2 à 6 unités
de
glucose, plus préférentiellement, de 3 à 5 unités de glucose. De préférence,
le
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groupement alkyle de l'alcool comprend de 6 à 26 atomes de carbone, plus
préférentiellement, de 8 à 20 atomes de carbone, de façon encore plus
préférentielle de 10 à 18 atomes de carbone.
Des esters d'alkylglucoside et d'acide(s) gras sont, par exemple, le dioléate
de
méthylglucose ou le sesquistéarate de méthylglucose.
N-alkylglucamide désigne un composé dont l'atome d'azote est substitué
par un groupement alkyle comprenant de 1 à 5 atomes de carbone, de
préférence, de 1 à 3 atomes de carbones, plus préférentiellement 1 atome de
carbone. En outre, la partie amide du N-alkylglucamide comprend de 6 à 26
atomes de carbone, plus préférentiellement, de 8 à 20 atomes de carbone, de
façon encore plus préférée de 10 à 18 atomes de carbone. Avantageusement,
le N-alkylglucamide est le N-lauroyl-N-méthylglucamide.
Dans une mise en oeuvre particulière, le tensioactif non ionique dérivé de
polyols est éthoxylé ou non éthoxylé.
Un tensioactif dérivé de polyols éthoxylé désigne un tensioactif dérivé de
polyols tel que défini ci-avant dont les fonctions hydroxyle libres ont réagi
avec
de l'oxyde d'éthylène conduisant à des groupements de type -0(C2H4)n0H, n
étant compris entre 1 et 15, de préférence entre 3 et 12, plus
préférentiellement
entre Set 10.
L'utilisation du tensioactif non ionique dérivé de polyols est réalisée en
quantité
suffisante pour stimuler ou favoriser la germination et/ou la croissance
racinaire, en particulier la formation de radicelles, et/ou l'ancrage vertical
des
racines d'un végétal (architecture racinaire).
Ledit tensioactif non ionique dérivé de polyols peut être utilisé en
combinaison
avec des nutriments, un ou plusieurs engrais, un ou plusieurs régulateurs de
croissance et/ou produits de biocontrôle.
Par exemple, l'utilisation du tensioactif non ionique dérivé de polyols peut
être
complétée par l'utilisation d'une ou plusieurs substances qui visent à
prévenir
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l'action d'organismes nuisibles pour les végétaux (éliciteurs, fongicides,
fongistatiques, bactéricides, bactériostatiques, insecticides, acaricides,
parasiticides, nématicides, taupicides, répulsif pour oiseaux ou gibiers), de
façon simultanée ou séquentielle.
Egalement, l'utilisation du tensioactif non ionique dérivé de polyols peut
être
faite en combinaison avec l'utilisation d'une ou plusieurs substances qui
visent
à détruire les végétaux indésirables ou en ralentir leur croissance
(herbicides,
antidicotylédones).
L'utilisation du tensioactif non ionique dérivé de polyols permet également de
favoriser l'absorption d'eau et/ou la rétention d'eau dans les feuilles, les
racines
et les téguments, l'étalement à la surface des plantes (parties aériennes et
souterraines) en vue d'augmenter la surface de contact, le passage de
molécules par la lamelle moyenne ou encore d'augmenter le temps de contact
avec les substances actives ou nutritives, ou de limiter l'évaporation d'eau
par
les feuilles, comme décrit ci-après.
Dans le cadre de la présente invention, l'utilisation du tensioactif non
ionique
dérivé de polyols peut être faite en pré ou post émergence, sur la graine, la
plantule (stade juvénile antérieur à la floraison), la plante en cours de
floraison
(avant, pendant ou après pollinisation), la plante après fécondation, la
plante
en cours de fructification, le fruit, les fleurs, les feuilles, les tiges, les
racines ou
dans le sol, et/ou le milieu de culture, avant ou après semis.
Par émergence , on entend la levée d'une plantule du soL
De préférence, le tensioactif non ionique dérivé de polyols est appliqué sur
la
graine
II est possible de traiter des végétaux cultivés en plein champ ou des
végétaux
sous serre ou encore des végétaux cultivés en hors sol.
L'utilisation du tensioactif non ionique dérivé de polyols selon l'invention
peut
être faite sur tout type de plantes, la plante étant choisie parmi les
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Dicotylédones ou les Monocotylédones et plus particulièrement dans le groupe
comprenant les céréales et produits céréaliers, les plantes à racines et
tubercules, les saccharifères), les plantes légumineuses, les végétaux à
fruits à
coques, les plantes oléifères ou oléagineuses, les plantes de culture
légumière,
les fruitiers, les plantes aromatiques et les épices, les plantes de cultures
florales, les plantes de culture industrielle destinées à la production d'une
matière première en vue de sa transformation etc..
Des exemples de céréales et produits céréaliers sont le blé, le colza, ou le
maïs.
Des exemples de plantes à racine et tubercules sont le manioc, la patate
douce, l'igname, la colocase, le macabo, la pomme de terre, le topinambour, le
crosne, le jicama, la betterave, la capucine tubéreuse, la carotte, le céleri-
rave,
le cerfeuil tubéreux, le chou-rave, le conopode dénudé, le radis, le dahlia,
le
gingembre, le ginseng, la glycine tubéreuse, l'hélianthi, l'hoffe, le maca, le
navet, le panais, le persil tubéreux, la poire de terre, le raifort, le
rutabaga, le
salsifis, le Scolyme d'Espagne, la scorsonère, ou l'ulluco.
Par saccharifère , on entend un végétal produisant du sucre ; par exemple,
la betterave à sucre ou la canne à sucre.
Des exemples de légumineuses sont les lentilles, les pois cassés, les petits
pois, les pois chiches, les haricots, les fèves, le soja, les arachides, le
trèfle, le
caroubier, la réglisse, ou la luzerne.
Des exemples de végétaux à fruits à coques sont les noix, les amandes, ou les
noisettes.
Des exemples de plantes oléifères ou oléagineuses sont le colza ou le
tournesol.
Des exemples de plantes de culture légumière sont la tomate, ou la courgette.
Des exemples de fruitiers sont le fraisier, le cerisier, ou le bananier.
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Des exemples de plantes aromatiques et épices sont le persil, ou la cannelle.
Des exemples de plantes de culture florale sont le chrysanthème, le rosier, ou
Buddleja davidii.
Des exemples de plantes de culture industrielle destinées à la production
d'une
5 matière première en vue de sa transformation sont le lin, ou le coton.
De préférence, le végétal est choisi parmi le soja, le maïs, le persil, le
fraisier et
Buddleja davidii (aussi appelé arbre aux papillons), plus préférentiellement,
le
végétal est choisi parmi le maïs et le persil.
La présente invention a également pour objet un procédé de stimulation de la
10 germination et/ou de la croissance racinaire, et/ou de l'ancrage
vertical des
racines d'un végétal comprenant l'application d'au moins un tensioactif non
ionique dérivé de polyols tel que décrit ci-dessus.
Tous les apects généraux et particuliers décrits plus haut pour l'utilisation
d'un
tensioactif non ionique dérivé de polyols en tant qu'agent stimulateur de la
germination et/ou de la croissance racinaire, et/ou de l'ancrage vertical des
racines s'appliquent également au procédé de stimulation.
Dans le cadre de l'invention, l'étape d'application du tensioactif non ionique
dérivé de polyols peut être réalisée après l'émergence ou avant l'émergence.
Le tensioactif non ionique dérivé de polyols peut être appliqué par la
pulvérisation, arrosage de la plante, addition à un milieu de culture en
hydroponie, immersion de la graine et/ou par enrobage de la graine, de
préférence par immersion de la graine.
L'invention concerne également l'utilisation d'au moins un tensioactif non
ionique dérivé de polyols, tel que décrit plus haut, en tant qu'agent
adjuvant.
De préférence, ledit dérivé de polyols est un dérivé de sucre.
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On entend par adjuvant , un composé ou une préparation dépourvu(e)
d'activité phytopharmaceutique que l'on ajoute aux produits
phytopharmaceutiques afin de renforcer leurs propriétés physiques, chimiques
et/ou biologiques.
Par produit phytopharmaceutique ou phytosanitaire, on entend une substance
active ou une composition comprenant une ou plusieurs substances actives,
qui est destinée notamment à :
- protéger au moins un végétal contre au moins un organisme nuisible ou
à prévenir son action;
- exercer une action sur un processus vital d'un végétal, pour autant qu'il
ne s'agisse pas de substances nutritives (par exemple, les régulateurs de
croissance) ; et/ou
- assurer la conservation d'un végétal.
De façon non limitative, les substances actives peuvent être soit d'origine
naturelle, soit issues de la chimie de synthèse, qui peuvent être des
substances mimétiques de substances naturelles, telles que les phéromones.
Les adjuvants ne sont pas des produits phytopharmaceutiques, ils n'ont pas
d'action protectrice contre les bio-agresseurs comme les produits
phytopharmaceutiques, mais ils facilitent leur rôle en améliorant leurs
performances (rétention et/ou étalement) et peuvent diminuer les effets
néfastes comme le ruissellement ou la dérive.
L'utilisation des produits phytosanitaires nécessitent une préparation
particulière en fonction du mode de traitement, la surface traitée et la
culture
traitée. La solution de produit(s) phytosanitaire(s) préparée est appelée
bouillie
phytosanitaire. Dans la présente description, on entend par bouillie , une
solution de produit(s) phytosanitaire(s).
L'activité d 'un composé ou d'une préparation en tant qu'adjuvant nécessite
que ledit composé ou préparation possède au moins une des fonctions
suivantes :
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- Activité d'étalement : Permet la rétention et l'étalement des
gouttelettes de la bouillie en diminuant les tensions superficielles à la
surface de celle-ci.
- Activité pénétrante : Favorise la pénétration du produit phytosanitaire.
- Activité de rétention : Favorise le maintien des gouttelettes de la
bouillie sur la feuille au moment de l'impact.
- Adhésivité : Favorise le maintien de la bouillie après l'impact. Apporte
une meilleure résistance au lessivage et à l'évaporation.
- Limitation de la dérive : Les gouttelettes les plus fines (< 100pm) se
dispersent dans l'atmosphère. L'adjuvant antidérive homogénéise la
taille des gouttelettes en limitant les plus petites.
- Activité humectante : Permet de maintenir l'hygrométrie à la surface de
la feuille : évite la cristallisation de la matière active et l'évaporation de
la
bouillie.
- Activité anti-mousse : Empêche la formation de mousse dans la cuve
lors de la préparation de la bouillie.
- Activité homogénéisante: Permet de neutraliser les eaux dures, de
tamponner le pH et/ou stabiliser la bouillie.
- Activité acidifiante : Certaines matières actives sont rapidement
dégradées dans un milieu basique (pH > 7) ce qui diminue leur
efficacité. Les acidifiants permettent de maintenir le pH entre 5 et 7.
On a maintenant trouvé que l'utilisation d'au moins un tensioactif non ionique
dérivé de polyols permet de remplir au moins une, voire toutes les fonctions
décrites ci-dessus, auxquelles sont avantageusement associées les fonctions
suivantes :
¨ Augmentation du temps de contact : la disponibilité des molécules est
dépendante à la fois surface et du temps. Si la majorité des adjuvants
améliorent l'étalement, peu en revanche y associent l'augmentation du
temps de contact.
¨ Activité solubilisante : favorise la miscibilité des substances non
miscibles entre elles.
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¨ Activité de rémanence : permet la réactivation des molécules lors
d'une nouvelle exposition à l'eau.
¨ Propriété de bio-compatibilité : n'interfère pas avec les différentes
souches de microorganismes (bactéries, de levure ou de champignons).
¨ Propriété de solubilité spontanée : soluble indifféremment dans l'eau
et dans l'huile.
Avantageusement, ledit tensioactif non ionique dérivé de polyols possède une
ou plusieur(s) activité(s) choisie parmi les suivantes :
- agent de pénétration,
- agent de limitation de la dérive,
- agent d'adhésivité,
- agent réducteur de mousse,
- agent solubilisant,
- agent de modification de pH,
- agent homogénéisant,
- agent de rémanence à la surface foliaire,
- agent permettant de réduire la teneur en produit(s) phytosanitaire(s),
et peut être utilisé dans les applications correspondantes.
Selon l'invention, la capacité dudit tensioactif non ionique dérivé de polyols
à
associer plusieurs ou toutes ces fonctions, permet simultanément de réduire
efficacement et dans des proportions importantes l'utilisation des produits
phytosanitaires tout en accroissant leur niveau d'efficacité.
L'invention répond ainsi à une vision écologique en assurant une plus forte
sécurité environnementale, une meilleure efficacité des substances actives et
.. la modulation des doses.
L'invention concerne également un procédé de traitement
phytopharmaceutique, comprenant l'administration à un végétal d'un tensioactif
non ionique dérivé de polyols tel que défini plus haut comme adjuvant d'un
produit phytopharmaceutique.
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Tous les apects généraux et particuliers décrits plus haut pour l'utilisation
d'un
tensioactif non ionique dérivé de polyols en tant qu'agent stimulateur de la
croissance végétale exerçant une activité sur les graines et/ou les racines
d'un
végétal s'appliquent également dans le cadre de son utilisation en tant
qu'adjuvant.
La présente invention est illustrée, de manière non limitative par les
exemples
suivants, ainsi que les figures 1 à 31 :
Figure 1 : Effet du stéarate de saccharose sur la germination des graines de
soja : pourcentage de graines germées traitées ou non traitées (contrôle) en
fonction du temps (jours).
Figure 2: Effet du stéarate de saccharose sur la germination des graines de
maïs : pourcentage de graines germées traitées ou non traitées (contrôle) en
fonction du temps (jours).
Figure 3: Effet du stéarate de saccharose sur la germination des graines de
persil : pourcentage de graines germées traitées ou non traitées (contrôle) en
fonction du temps (jours).
Figure 4: Effet du stéarate de saccharose sur la capacité des graines de
persil
à absorber l'eau. Pourcentage d'eau absorbée en fonction de la concentration
en stéarate de saccharose comparé aux graines non traitées (contrôle).
Figure 5: Effet du stéarate de saccharose sur la croissance racinaire du
persil : à gauche le pourcentage de racine d'une taille comprise entre 100 et
120 mm et entre 120 et 140 mm est mesurée en comparaison à celui des
plantes non traitées (contrôle), à droite le diamètre moyen du pivot est
mesuré
en comparaison à celui des plantes non traitées (contrôle), en bas le poids
moyen du pivot est mesuré en comparaison à celui des plantes non traitées
(contrôle).
Figure 6: Effet du stéarate de saccharose sur la capacité des racines de
persil
à absorber l'eau. Deux jours après l'arrosage, les racines sont prélevées,
pesées puis placées à 42 C. Après 30 min, 1h30, 2h, 4h et 48h, le poids des
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racines est relevé et la quantité d'eau retenue est calculée en pourcentage du
poids initial.
Figure 7: Effet du stéarate de saccharose sur l'étalement d'une solution
aqueuse sur une feuille : le nombre et la taille des gouttes sur la surface
5 supérieure de la feuille sont comparés après pulvérisation d'eau
(contrôle) ou
d'une solution comprenant 0,75% de stéarate de saccharose.
Figure 8: Effet du stéarate de saccharose sur l'évaporation de l'eau à la
surface des feuilles. Le poids de la feuille est noté avant le traitement, 1
min
après, puis toutes les 5 min. Le pourcentage d'eau retenue est calculé par
10 rapport au poids initial sur des feuilles traitées avec 3% de stéarate
de
saccharose ou d'eau (contrôle).
Figure 9: Effet du stéarate de saccharose sur la teneur en calcium des
feuilles. Après sept jours de traitement avec une solution d'eau (contrôle) ou
3% de stéarate de saccharose, les feuilles sont récoltées et analysées pour
15 déterminer leur teneur en calcium.
Figure 10: Effet du stéarate de saccharose sur la teneur en protéines du
persil. Après 23 jours de traitement avec une solution d'eau (contrôle) ou
0,75% de stéarate de saccharose les feuilles sont coupées et une analyse de
la quantité en protéines est réalisée.
Figure 11 : Effet du stéarate de saccharose sur la croissance racinaire sur
des
graines de maïs : comparaison des graines non traitées (contrôle) aux graines
traitées au bout de deux jours.
Figure 12: Effet du stéarate de saccharose sur l'ancrage vertical des racines
des graines de persil (essais en champs) : comparaison des graines non
traitées (contrôle) aux graines traitées au bout de douze semaines.
Figure 13: Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du laurate de
sorbitane (lot Sub4) sur la germination des graines de maïs : pourcentage de
graines germées traitées (lot traité et Sub4) ou non traitées (contrôle) après
un
et deux jours.
Figure 14: Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du palmitate de
saccharose (lot Subi) sur la germination des graines de maïs : pourcentage de
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graines germées traitées (lot traité et Subi) ou non traitées (contrôle) après
un
et deux jours.
Figure 15 : Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du stéarate de
glucose (lot 5ub7) sur la germination des graines de maïs : pourcentage de
graines germées traitées (lot traité et 5ub7) ou non traitées (contrôle) après
un
et deux jours.
Figure 16: Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du laurate de
sorbitane polyéthoxylé (lot 5ub2) sur la germination des graines de maïs :
pourcentage de graines germées traitées (lot traité et 5ub2) ou non traitées
(contrôle) après un et deux jours.
Figure 17: Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du décyl glucoside
(lot 5ub3) sur la germination des graines de maïs : pourcentage de graines
germées traitées (lot traité et 5ub3) ou non traitées (contrôle) après un et
deux
jours.
Figure 18: Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du N-lauroyl-N-
méthyl-glucamide (lot 5ub6) sur la germination des graines de maïs :
pourcentage de graines germées traitées (lot traité et 5ub6) ou non traitées
(contrôle) après un et deux jours.
Figure 19: Effet du stéarate de saccharose (lot traité) et du dioléate de
méthylglucose (lot 5ub5) sur la germination des graines de maïs : pourcentage
de graines germées traitées (lot traité et 5ub5) ou non traitées (contrôle)
après
un et deux jours.
Figure 20: Effet du stéarate de saccharose sur la pénétration d'une solution
aqueuse colorée : comparaison des étapes avant traitement, au dépôt du
traitement, après 2h d'application et après essuyage.
Figure 21 : Effet du stéarate de saccharose sur la limitation de la dérive :
comparaison de la taille des gouttelettes suite à la pulvérisation d'une
solution
aqueuse comprenant du stéarate de saccharose (lot traité) et d'une solution
aqueuse n'en comprenant pas (lot contrôle), en fonction de différentes
pressions croissantes appliquées (a, b et c).
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Figure 22 : Effet du stéarate de saccharose sur l'adhésivité d'une solution
sur
une feuille : comparaison de feuilles non traitées (lot contrôle) à des
feuilles
traitées avant et après pulvérisation de la solution, puis après lessivage.
Figure 23: Effet du stéarate de saccharose sur la formation de mousse :
comparaison d'une solution contrôle à une solution traitée avant agitation,
immédiatement après agitation, et 1h après agitation.
Figure 24: Effet du stéarate de saccharose sur la solubilisation : comparaison
d'une solution contrôle à une solution traitée.
Figure 25: Effet du stéarate de saccharose sur la modification du pH : pH en
fonction de la concentration d'une solution selon l'invention comprenant 2,5%
de stéarate de saccharose.
Figure 26: Effet du stéarate de saccharose sur l'homogénéisation :
comparaison d'un mélange contrôle avec un mélange comprenant du stéarate
de saccharose (lot traité). A gauche : après un passage à l'étuve (45 C)
pendant 24h, à droite : après une centrifugation de 20 minutes à 4000 rpm.
Figure 27: Effet du stéarate de saccharose sur la rémanence : comparaison
de la coloration des eaux de rinçage obtenues après 1, 2, 3 et 4 rinçages
d'une
solution contrôle et d'une solution comprenant du stéarate de saccharose
(traité).
Figure 28: Effet du stéarate de saccharose sur la rémanence : mesure de la
coloration de l'eau de rinçage à 630 nm (DO) en fonction du nombre de
rinçages pour le lot contrôle et le lot traité.
Figure 29: Solubilité du stéarate de saccharose dans de l'eau (Lot A) ou dans
de l'huile (Lot B) après centrifugation 5 min à 4000 rpm.
Figure 30: Effet du stéarate de saccharose sur la diminution de la
concentration en produits phytosanitaires sur le blé : comparaison au début de
l'épiaison d'un lot sans stéarate de saccharose (témoin référence) avec un lot
en comprenant (traité).
Figure 31 : Effet du stéarate de saccharose sur la diminution de la
concentration en produits phytosanitaires sur le maïs : comparaison au stade
12-14 feuilles d'un lot sans stéarate de saccharose (témoin référence) avec un
lot en comprenant (traité).
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Matériel utilisé
La provenance des différents produits utilisés dans les exemples ci-dessous
est résumée dans le tableau 1 suivant :
Tableau 1
Matériel Fournisseur
Stéarate de saccharose SISTERNA
Lau rate de sorbitane ESCUDER
Palmitate de saccharose SISTERNA
Stéarate de glucose EVONIK
Laurate de sorbitane polyéthoxylé ESCUDER
Décyl glucoside ESCUDER
N-lauroyl-N-méthylglucamide CLARIANT
Dioléate de méthylglucose LUBRIZOL
Graines de maïs SYNGENTA
Graines d'orge ARVALIS
Graines de persil VILMORIN
Graines de soja SYNGENTA
Sauf stipulation contraire, les pourcentages sont exprimés en pourcentages
pondéraux.
Exemple 1 : Utilisation d'un ester de sucre en tant que substance
stimulatrice de la germination des graines de soja.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Le traitement de graines de soja consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
99,25% d'eau et de 0,75% de sucrose stéarate (lot traité). Les graines sont
ensuite séchées dans un tunnel chauffant à 45 C pendant une heure. Quatre
répétitions de lot de 15 graines sont déposées sur boites de Pétri contenant
un
milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98% d'eau.
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Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
compté.
Les résultats sont présentés dans la figure 1. Après 1 jour on observe 4 fois
plus de graines germées pour le lot traité en comparaison du lot contrôle.
L'application de sucrose stéarate par immersion des graines de soja augmente
la cinétique de germination en moyenne de 25%.
Exemple 2 : Utilisation d'un ester de sucre en tant que substance
stimulatrice de la germination des graines de maïs.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
99,25% d'eau et de 0,75% de sucrose ester (lot traité). Les graines sont
ensuite séchées dans un tunnel chauffant à 45 C pendant une heure. Quatre
répétitions de lot de 16 graines sont déposées sur boites de Pétri contenant
un
milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98% d'eau.
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
compté.
Les résultats sont présentés dans la figure 2.
Après 2 jours on observe 10 fois plus de graines germées pour le lot traité en
comparaison du lot contrôle. L'application de sucrose stéarate par immersion
des graines de maïs augmente la cinétique de germination en moyenne de
30%.
Exemple 3 : Utilisation d'un ester de sucre en tant que substance
stimulatrice de la germination des graines de persil.
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L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Le traitement de graines de persil consiste à les immerger lh dans une
solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
99,25% d'eau et de 0,75% de sucrose ester (lot traité). Les graines sont
5 ensuite séchées dans un tunnel chauffant à 45 C pendant une heure. Deux
répétitions de lot de 48 graines sont déposées sur boites de Pétri contenant
un
milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98% d'eau.
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
10 compté.
Les résultats sont présentés dans la figure 3.
Entre 4 jours et 6 jours on observe 2 fois plus de graines germées pour le lot
traité en comparaison du lot contrôle. L'application de sucrose stéarate par
immersion des graines de persil augmente la cinétique de germination en
15 moyenne de 10%.
Exemple 4: Effet d'un ester de sucre sur la capacité des graines à
absorber l'eau.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Le traitement de graines de persil consiste à immerger 1g de graines de persil
20 dans :
- 25 millilitres d'une solution comprenant de l'eau seule (lot contrôle),
- 25 millilitres d'une solution composée de 99% d'eau et d'1`)/0 de
sucrose stéarate (lot traité 1`)/0).
- 25 millilitres d'une solution composée de 98% d'eau et d'2% de
sucrose stéarate (lot traité 2%).
- 25 millilitres d'une solution composée de 97% d'eau et d'3% de
sucrose stéarate (lot traité 3%).
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Après 1h d'immersion la solution est filtrée sur du tissu, les graines sont
récupérées et déposées sur papier absorbant pendant lmin puis pesées.
La quantité d'eau absorbée par les graines est calculée en pourcentage par
rapport au poids sec initial.
Les résultats sont présentés dans la figure 4.
La quantité d'eau absorbée augmente de facon linaire avec la quantité de
sucrose stéarate appliqué lors du traitement (1 et 3%) avec des variations de
teneur en eau allant de +30% à +70%. L'utilisation du sucrose stéarate
facilite
l'absorption de l'eau par la graine.
Exemple 5: Effet d'un ester de sucre sur la croissance racinaire (essais
en champs)
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Afin de tester l'effet de l'invention en condition du culture au champs, la
variété
de persil plat NOVAS (Petroselinum crispum var. neapolitanum) a été utilisée.
.. Le traitement consiste en une immersion pendant 1h des graines de persil
NOVAS:
- dans de l'eau (lot contrôle)
- dans une solution comprenant 97,5% d'eau et 2,5% de sucrose stéarate (lot
traité).
Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à 45 C pendant 1h.
Les graines sont semées mécaniquement (semoir) sur des planches de quatre
rangs chacune l'une à coté de l'autre pour limiter au maximum les variations
de
qualité de sol, d'ensoleillement et de température.
12 semaines après le semis, 25 pieds de persil on été prélevés afin de mesurer
plusieurs paramètres des racines : leur poids, leur longueur, et leur
diamètre.
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Les résultats sont présentés dans la figure 5.
12 semaines après le semis, on observe que, chez les plants traités :
- 74% des racines ont une longueur de plus de 10 cm contre 37% pour le
contrôle ;
- le diamètre du pivot des plants traités est en moyenne 30% plus important
comparé au contrôle ;
- le poids du pivot des plants traités est en moyenne 70% plus important
comparé au contrôle.
L'application de sucrose stéarate sur les graines permet une meilleure
croissance racinaire sur des plants de persil cultivés en champs.
Exemple 6: Effet d'un ester de sucre sur la capacité des racines à
absorber l'eau.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Des plants de persil en pot sont cultivés dans une enceinte climatique sous
les
conditions suivantes : 23 C et une photopériode de 16h/8h. Un pot de persil
comprend entre 20 et 25 pieds de persil. Le traitement des plants de persil
consiste à arroser les pots avec :
- 700m1 d'eau (lot contrôle)
- 700m1 d'une solution comprenant 99,99% et 0,01% de sucrose stéarate
(lot traité à 0,05%)
- 700m1 d'une solution comprenant 99,95% et 0,05% de sucrose stéarate
(lot traité à 0,05%)
- 700m1 d'une solution comprenant 99,85% et 0,15% de sucrose stéarate
(lot traité à 0,15%)
Deux jours après l'arrosage, les racines sont prélevées, pesées puis placées à
42 C. Après 30 min, 1h30, 2h, 4h et 48h, le poids des racines est relevé et la
quantité d'eau retenue est calculée en pourcentage du poids initial.
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Les résultats sont présentés dans la figure 6.
La quantité d'eau absorbée augmente de façon linaire avec la quantité de
sucrose stéarate appliqué lors du traitement (0,05 et 0,15%).
L'application de sucrose stéarate en arrosage facilite l'absorption de l'eau
par
les racines. Ceci peut s'expliquer par la croissance racinaire et en
particulier la
modification de l'architecture racinaire.
Exemple 7: Effet d'un ester de sucre sur l'étalement d'une solution
aqueuse sur une feuille.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Des plants de fraise sont cultivés dans une enceinte climatique sous les
conditions suivantes : 23 C et une photopériode de 16h/8h.
L'application de l'invention se fait par une pulvérisation sur les feuilles :
- d'eau (lot contrôle)
- d'une solution composée de 99,25% d'eau et de 0,75% de sucrose
stéarate (lot traité)
L'effet de sucrose stéarate est observé par le nombre et la taille des gouttes
sur la surface supérieure de la feuille.
Les résultats sont présentés sur la figure 7.
Avec l'application de sucrose stéarate en pulvérisation la solution est
répartie
de manière homogène sur la feuille, l'étalement des gouttes est optimisé. De
plus, un passage de la solution sur la face inférieure beaucoup plus important
a
été observé, en comparaison du lot contrôle.
En pulvérisation, le sucrose stéarate augmente la surface de contact et permet
donc d'optimiser les traitements phytosanitaires.
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Exemple 8: Effet d'un ester de sucre sur l'évaporation de l'eau à la
surface des feuilles.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate dont une solution est
appliquée
par pulvérisation sur des feuilles détachées de Buddleja davidii disposées à
plat sur un support. Le traitement consiste à pulvériser sur les feuilles
détachées :
- 14 grammes d'eau (lot contrôle)
- 14 grammes d'une solution composée de 97% d'eau et de 3% de
sucrose stéarate (lot traité).
Les feuilles sont ensuite maintenues à la verticale durant 6 secondes.
Le poids de la feuille est noté avant le traitement, 1 min après, puis toutes
les 5
min. Le pourcentage d'eau retenue est calculé par rapport au poids initial.
Les résultats sont présentés dans la figure 8.
La quantité d'eau retenue par les feuilles traité est de 3 à 8 fois plus
importante
que l'eau retenue par les feuilles contrôle.
L'application de sucrose stéarate par pulvérisation limite l'évaporation d'une
solution aqueuse sur les feuilles et augmente donc le temps de contact.
L'invention a donc un effet humectant en favorisant le maintien de
l'hydrométrie à la surface de la feuille.
Exemple 9: Effet d'un ester de sucre sur la teneur en calcium des feuilles
(amélioration de la pénétration).
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Des plants de persil en pot sont cultivés dans une enceinte climatique sous
les
conditions suivantes : 23 C et une photopériode de 16h/8h.
L'application de l'invention se fait par arrosage dans les bacs (180 ml) tous
les
trois jours et pulvérisation sur les feuilles deux fois par jour pendant sept
jours :
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- d'eau (lot contrôle)
- d'une solution composée de 97% d'eau et de 3% de sucrose stéarate
(lot traité).
Après sept jours de traitement, les feuilles sont récoltées et analysées pour
5 déterminer leur teneur en calcium.
Les résultats sont présentés dans la figure 9.
Le traitement avec l'invention permet une diminution de 17% du taux de
calcium dans les feuilles.
L'application en pulvérisation et arrosage de sucrose stéarate diminue la
10 quantité de calcium foliaire, élément clé de la rigidité de la lamelle
moyenne, ce
qui augmente la perméabilité de la lamelle moyenne. Par conséquent,
l'application d'un ester de sucre selon l'invention permet une meilleure
pénétration des produits appliqués sur la plante.
Exemple 10: Effet d'un ester de sucre sur la teneur en protéines du persil
15 (amélioration de l'efficience des nutriments).
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Des plants de persil en pot sont cultivés dans une enceinte climatique sous
les
conditions suivantes : 23 C et une photopériode de 16h/8h. Le traitement des
plants de persil consiste à arroser les pots tous les trois jours avec :
20 - 40 ml d'eau (lot contrôle)
- 40 ml d'une solution composée de 99,25% d'eau et de 0,75% de
sucrose stéarate (lot traité).
Chaque lot est constitué de quatre pots. Après 23 jours de traitement les
feuilles sont coupées et une analyse de la quantité en protéines est réalisée.
25 Les résultats sont présentés dans la figure 10.
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Le lot traité avec le sucrose stéarate permet une augmentation de 56% de la
quantité de protéines en comparaison du lot contrôle.
L'utilisation de sucrose stéarate dans l'eau d'arrosage permet une synthèse de
protéines plus importante, ce qui montre une meilleure assimilation de
l'azote.
Exemple 11 : Effet d'un ester de sucre sur la croissance racinaire.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
97,5% d'eau et de 2,5% de sucrose stéarate (lot traité). Les graines sont
ensuite séchées dans un tunnel chauffant à 45 C pendant une heure. Quatre
répétitions de lot de 16 graines sont déposées sur boites de Pétri contenant
un
milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98% d'eau.
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Les résultats sont présentés sur la figure 11.
Après deux jours, on observe la présence de radicelle (duvet autour du
radicule) sur les graines traitées germées alors que sur les graines contrôle
les
radicelles ne sont pas encore présentes.
Exemple 12: Effet d'un ester de sucre sur l'ancrage vertical de la racine
(essais en champs).
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Afin de tester l'effet de l'invention en condition du culture au champ, la
variété
de persil plat NOVAS a été utilisée.
Le traitement consiste en une immersion pendant 1h des graines de persil
NOVAS :
-dans de l'eau (lot contrôle)
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-dans une solution comprenant 97,5% d'eau et 2,5% de sucrose
stéarate (lot traité).
Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à 45 C pendant 1h.
Les graines sont semées mécaniquement (semoir) sur des planches de quatre
rangs chacune l'une à coté de l'autre pour limiter au maximum les variations
de
qualité de sol, d'ensoleillement et de température.
12 semaines après le semis, 25 pieds de persil ont été prélevés afin
d'observer
la morphologie racinaire.
Les résultats sont présentés dans la figure 12.
Les résultats montrent que le traitement des graines de persil par le sucrose
stéarate entraîne une élongation racinaire, couplée à un ancrage vertical des
racines.
Exemple 13: Utilisation du laurate de sorbitane en tant que substance
stimulatrice de la germination des graines de maïs.
On a utilisé le laurate de sorbitane (Sub4) en comparaison avec un traitement
par l'eau seule (contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, Sub4 ). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
d'eau.
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
compté.
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Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
présentés dans la figure 13.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le laurate de
sorbitane entraîne une augmentation du taux de germination par rapport au
contrôle, avec un taux de germination de 31% à J1 et de 78% à J2.
Exemple 14: Utilisation du palmitate de saccharose en tant que
substance stimulatrice de la germination des graines de maïs.
On a utilisé le palmitate de saccharose (Subi) en comparaison avec un
traitement par l'eau seule (contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, Subi). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
d'eau.
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
compté.
Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
présentés dans la figure 14.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le palmitate
de saccharose entraîne une augmentation du taux de germination par rapport
au contrôle, avec un taux de germination de 28% à J1 et de 78% à J2.
Exemple 15: Utilisation du stéarate de glucose en tant que substance
stimulatrice de la germination des graines de maïs.
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On a utilisé le stéarate de glucose (Sub7) en comparaison avec un traitement
par l'eau seule (contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, Sub7). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
d'eau. Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à
l'obscurité. Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une
radicule) est compté.
Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
présentés dans la figure 15.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le stéarate
de
glucose entraîne une augmentation du taux de germination par rapport au
contrôle, avec un taux de germination de 34% à J1 et de 78% à J2.
Exemple 16: Utilisation du laurate de sorbitane polyéthoxylé en tant que
substance stimulatrice de la germination des graines de maïs.
On a utilisé le laurate de sorbitane polyéthoxylé (Sub2), ce dernier étant
aussi
appelé polysorbate 20, en comparaison avec un traitement par l'eau seule
(contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, Sub2). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
d'eau.
CA 03072122 2020-02-05
WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
compté.
Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
5 présentés dans la figure 16.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le laurate de
sorbitane polyéthoxylé (polysorbate 20) entraîne une augmentation du taux de
germination par rapport au contrôle, avec un taux de germination de 25% à J1
et de 78% à J2.
10 Exemple 17: Utilisation du décyl glucoside en tant que substance
stimulatrice de la germination des graines de maïs.
On a utilisé le décyl glucoside (Sub3) en comparaison avec un traitement par
l'eau seule (contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
15 comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée
de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, Sub3). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
20 d'eau.
Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
présentés dans la figure 17.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le décyl
glucoside entraîne une augmentation du taux de germination par rapport au
25 contrôle, avec un taux de germination de 19% à J1 et de 84% à J2.
Exemple 18: Utilisation du N-lauroyl-N-méthylglucamide en tant que
substance stimulatrice de la germination des graines de maïs.
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WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
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On a utilisé le N-lauroyl-N-méthyl-glucamide (Sub6) en comparaison avec un
traitement par l'eau seule (contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, Sub6). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
d'eau.
Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
présentés dans la figure 18.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le N-lauroyl-
N-méthylglucamide entraîne une augmentation du taux de germination par
rapport au contrôle, avec un taux de germination de 28% à J1 et de 65% à J2.
.. Exemple 19: Utilisation de dioléate de méthylglucose en tant que
substance stimulatrice de la germination des graines de maïs.
On a utilisé le dioléate de méthylglucose (Sub5) en comparaison avec un
traitement par l'eau seule (contrôle), ou par le sucrose stéarate (traité).
Le traitement de graines de maïs consiste à les immerger lh dans une solution
comprenant de l'eau seule (lot contrôle) ou dans une solution composée de
98,25% d'eau et de 0,75% d'un tensioactif non ionique dérivé de polyol (lot
traité, 5ub5). Les graines sont ensuite séchées dans un tunnel chauffant à
45 C pendant une heure. Deux répétitions de lot de 16 graines sont déposées
sur boites de Pétri contenant un milieu composé de 2% d'Agar Agar et de 98%
d'eau.
Les boites de Pétri sont conservées à température ambiante et à l'obscurité.
Chaque jour le nombre de graines germées (présentant une radicule) est
compté.
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WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
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Les résultats après un jour et deux jours (J1 et J2 respectivement) sont
présentés dans la figure 19.
Les résultats montrent que le traitement des graines de maïs par le dioléate
de
méthylglucose entraîne une augmentation du taux de germination par rapport
au contrôle, avec un taux de germination de 18% à J1 et de 65% à J2.
Exemple 20 : Amélioration du rendement (orge).
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Des essais en chambre climatique (température 2200/2000, photopériode
16h/8h, 25 000 lux) ont été réalisés sur de l'orge d'hiver (variété Sobell,
Arvalis). L'orge a été semée dans des bacs de 1 mètre sur 1 mètre. Au début
du tallage, l'orge a été traitée par pulvérisation avec :
- Lot contrôle : 31/ha d'eau
- Lot traité : 3 1/ha d'une solution composée de 97% d'eau et de 3% de
sucrose stéarate.
.. Les plants ont ensuite été arrosés toutes les 2 semaines avec la même
quantité d'eau que ce soit le lot contrôle ou traité.
Les rendements sont ensuite calculés par le ratio du poids de graines
récoltées
sur la surface semée. Ce ratio est ramené en q/ha. Les résultats sont
présentés dans le tableau 2 ci-dessous :
Tableau 2
Lot contrôle Lot traité
Rendement (q/ha) 54,2 67,9
L'utilisation de l'ester de sucre selon l'invention permet d'augmenter le
rendement de 25%.
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Exemple 21: Effet d'un ester de sucre sur la pénétration de la bouillie.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Le colza, plante étant connue pour avoir une cuticule épaisse, a été choisi
afin
de tester l'efficacité de l'invention en tant qu'agent pénétrant.
Un colorant en solution aqueuse a été déposé sur une feuille de colza, puis
laissé pendant 2h et ensuite essuyé. Deux solutions ont été testées :
-Contrôle : eau seule
-Traité : une solution comprenant 97,5% d'eau et 2,5% de sucrose
stéarate.
Des clichés ont été pris à chaque étape et sont présentés dans la figure 20.
Les résultats montrent que l'utilisation de l'ester de sucre selon l'invention
permet au colorant de colorer la feuille et donc de pénétrer au travers de la
cuticule. L'eau seule n'a pas permis au colorant de passer la barrière
physique
que représente la cuticule du colza.
.. L'utilisation de l'ester de sucre selon l'invention permet d'augmenter la
capacité d'une solution aqueuse à pénétrer dans la cuticule, ce qui montre
qu'il
peut être utilisé en tant qu'agent de pénétration.
Exemple 22: Effet d'un ester de sucre sur la limitation de la dérive.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Pour mesurer l'effet de l'ester de sucre selon l'invention sur la formation
des
gouttes après pulvérisation, deux solutions ont été pulvérisées avec une buse
de type fente classique :
- une solution composée de 95% d'eau et de 5% de dioxyde de titane
(lot contrôle)
- une solution composée de 92,5% d'eau, de 5% de dioxyde de titane et
2,5% de sucrose stéarate (lot traité).
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WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
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Des pressions croissantes (2, 4 et 8 bars) ont été utilisées afin de tester
différentes conditions (Figure 21 : a, b et c respectivement). Plus la
pression
est importante plus les gouttes sont nombreuses et fines.
On constate que, dans les 3 conditions testées, l'utilisation de l'ester de
sucre
selon l'invention permet une augmentation de la taille des gouttes.
L'utilisation
de l'ester de sucre selon l'invention permet donc une limitation de la dérive
en
favorisant l'augmentation de la taille des gouttes ou gouttelettes.
Exemple 23: Effet d'un ester de sucre sur l'adhésivité d'une solution sur
la feuille.
.. L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Une solution est appliquée par pulvérisation sur des feuilles détachées de
Buddleja davidii disposées à plat sur un support. Le traitement consiste à
pulvériser sur les feuilles détachées :
- 14 grammes d'une solution composée de 97% d'eau et de 3% de
.. dioxyde de titane (lot contrôle)
- 14 grammes d'une solution composée de 94,5% d'eau, de 3% de
dioxyde de titane et 2,5% de sucrose stéarate (lot traité).
Les feuilles sont ensuite laissées à température ambiante jusqu'à
l'évaporation
complète des solutions pulvérisées.
14 grammes d'eau sont ensuite pulvérisés sur les feuilles maintenues à la
verticale pour simuler une pluie. Les résidus de titane sur la feuille sont
ensuite
observés.
Les résultats sont présentés dans la figure 22.
Sur le lot contrôle, le dioxyde de titane est quasiment imperceptible après
lessivage. En revanche, sur le lot traité le dioxyde de titane est toujours
bien
visible, même si l'on observe une légère diminution de la coloration après
lessivage.
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WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
Les résultats montrent que l'utilisation de l'ester de sucre selon l'invention
permet de limiter le lessivage des produits phytosanitaires.
Exemple 24: Effet d'un ester de sucre sur la formation de la mousse lors
de la préparation de la bouillie.
5 L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Afin de mesurer l'effet de l'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention
sur la
formation de la mousse lors d'un mélange, deux solutions ont été préparées :
- lot contrôle : une solution composée de 99% d'eau et de 1`)/0 d'agent
moussant (Cocamidopropylbétaine).
10 - lot traité : une solution composée de 98% d'eau, de 1% d'agent
moussant (Cocamidopropylbétaine) et de 1`)/0 de sucrose stéarate.
Les deux solutions sont ensuite agitées de manière équivalente, des photos
sont prises avant, immédiatement après agitation et 1h après agitation. Les
résultats sont présentés en figure 23.
15 Les résultats montrent que l'utilisation d'un ester de sucre selon
l'invention
permet de réduire le volume de mousse obtenu immédiatement après agitation
de 30%. L'invention permet de prévenir la formation de mousse lors de la
préparation des bouillies phytosanitaires.
Exemple 25 : Effet d'un ester de sucre sur l'homogénéisation de la
20 bouillie.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Afin de tester l'effet de l'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention
sur
l'homogénéisation de la bouillie, un mélange de deux solutions de solubilités
identiques (aqueuses) mais de masses volumiques différentes (1 et 1,7 g/cm3)
25 est réalisé. Deux essais sont réalisés :
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- Contrôle : solution composée de 98% d'eau et de 2% de glycérine
colorée en bleue
- Traité : solution composée de 97% d'eau, de 1 'Vo de sucrose stéarate
et de 2% de glycérine colorée en bleue.
Les mélanges sont ensuite agités de manière équivalente. Des photos sont
prises après agitation.
Les résultats sont présentés dans la figure 24.
L'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention permet une meilleure
homogénéisation de la bouillie.
Exemple 26: Effet d'un ester de sucre sur la modification du pH de la
bouillie.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Afin de de mesurer l'effet de l'utilisation d'un ester de sucre selon
l'invention
sur le pH, une solution à pH 9,4 a été préparée d'une part, et une solution
composée de 97,5% d'eau, 2,5% de sucrose stéarate a été préparée d'autre
part.
La solution comprenant du sucrose stéarate (solution selon l'invention) a été
ajoutée à la solution à pH 9,4 avec des concentrations différentes : 0,1%,
0,5%,
1%, 2%, 3%, 5% et 10%. Le pH a été mesuré après chaque ajout de
l'invention.
Les résultats sont présentés dans la figure 25.
On a pu mesurer que dès l'ajout de 0,5% de la solution comprenant le sucrose
stéarate, le pH baisse de 9,4 à 6,33. En augmentant la concentration de la
solution comprenant le sucrose stéarate, le pH se stabilise ensuite à 5,25.
L'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention permet donc une
acidification
de la bouillie dès 0,5%.
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Exemple 27: Effet d'un ester de sucre sur la solubilisation de la bouillie.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Deux mélanges ont été préparés :
- lot contrôle : mélange comprenant 95% d'eau et 5% d'huile de
tournesol
- lot traité : mélange comprenant 5% d'huile de tournesol et 95% d'une
solution composée de 97,5% d'eau et de 2,5% de sucrose stéarate.
Les deux mélanges ont été réalisés à température ambiante sous agitation
rapide.
.. La stabilité des mélanges est observée de deux façons :
- Après un passage à l'étuve (45 C) durant 24h,
- Après une centrifugation de 20 min à 4000 rpm (rotations par minute).
Les résultats sont présentés dans la figure 26.
Dans les deux tests réalisés on observe que le lot contrôle présente deux
phases alors que le lot traité présente une seule phase, y compris après
centrifugation.
L'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention permet donc d'augmenter la
solubilisation de substance non miscible à la bouillie.
Exemple 28: Effet d'un ester de sucre sur la rémanence de la bouillie à la
surface foliaire.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
L'effet de l'invention sur la rémanence de la bouillie a été évaluée après
pulvérisation d'une solution colorée en bleu sur des feuilles détachées de
Buddleja davidii. Deux essais ont été réalisés :
- Contrôle : solution composée de 99,9% d'eau et 0,1% de colorant
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- Traité : solution composée de 98,9% d'eau, de 0,1% de colorant et de
1`)/0 de sucrose stéarate.
Après pulvérisation les feuilles sont laissées à température ambiante jusqu'à
évaporation de la solution pulvérisée.
Puis plusieurs rinçages des feuilles sont réalisés à l'eau. L'eau de rinçage
est
collectée après chaque rinçage et des photos sont prises pour observer et
comparer la coloration des eaux de rinçage. Une mesure d'absorbance à 630
nm est aussi réalisée par spectrophotométrie.
Les résultats sont présentés dans la figure 27.
Les résultats montrent que, sur le lot contrôle la rémanence de la bouillie
disparait au 2 rinçage, alors que sur le lot traité la présence de bouillie
reste
présente même après le 4 rinçage.
Les mesures d'absorbance confirment les observations faites ci-dessus (figure
28). Sur le lot contrôle, le lessivage du produit en surface est très
important ; on
le constate sur la valeur de la densité optique (DO) qui est très supérieure
au
lot traité. Ceci est confirmé par la mesure effectuée sur les 3 autres
rinçages
pour lesquels la DO du contrôle est faible (moins de produit présent à la
surface de la feuille) alors qu'il reste du produit sur le lot contrôle.
L'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention permet donc une meilleure
rémanence de la bouillie à la surface foliaire.
Exemple 29 : Impact d'un ester de sucre sur les microorganismes
(biocompatibilité).
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Afin d'évaluer l'impact éventuel des esters de sucres utilisés selon
l'invention
.. sur les microorganismes, l'effet fongicide a été recherché par une méthode
de
type antibiogramme.
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La méthode consiste à:
- étaler une solution contaminée avec la moisissure Aspergillus figer en
surface d'une boite de Pétri contenant une gélose glucosée au
chloramphénicol.
- disposer 4 disques stériles pour antibiogramme d'un diamètre de 6 mm
par boite de Pétri.
- inoculer 3 gouttes (0,071 g) de solution à tester ou de solution témoin
par disque.
Les boites sont ensuite mises à l'étuve à 25 C pendant 5 jours.
Une mesure du diamètre d'inhibition est réalisée chaque jour.
Les solutions testées sont :
-Traité 0,1 % : une solution composée de 99,9% d'eau et de 0,1% de
sucrose stéarate
-Traité 1% : une solution composée de 99% d'eau et de 1% de sucrose
stéarate
-Traité 3% : une solution composée de 97% d'eau et de 3% de sucrose
stéarate
-Traité 10% : une solution composée de 90% d'eau et de 10% de
sucrose stéarate
-Témoin : un fongicide agricole (Epoxiconazole)
Les résultats sont présentés dans le tableau 3.
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WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
Tableau 3
Diamètre d'inhibition en mm
Echantillon
J1 J2 J 3 J4 J5
TRAITE 0 0 0 0 0
0,1%
TRAITE 1% 0 0 0 0 0
TRAITE 3`)/0 0 0 0 0 0
TRAITE 10`)/0 0 0 0 0 0
TEMOIN 0 32 30 30 29
Les résultats montrent que, en comparaison avec un produit fongicide utilisé
comme témoin positif, l'ester de sucre ne présente pas d'effet fongicide
quelles
5 que soient les concentrations testées.
Exemple 30 : Solubilité d'un ester de sucre.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Pour définir la solubilité d'un ester de sucre selon l'invention, 3% de
sucrose
stéarate ont été mélangés avec de l'eau (Lot A) ou avec de l'huile de
tournesol
10 (Lot B). Après le mélange, les deux solutions été centrifugées 5 min à
4000
rpm. Une photo a été prise après la centrifugation et est présentée dans la
figure 29.
Après centrifugation, on observe toujours une seule phase, que ce soit en
mélange avec de l'eau ou de l'huile, démontrant la stabilité de la solution.
15 Les résultats montrent que l'ester de sucre selon l'invention est
miscible à l'eau
comme à l'huile.
Exemple 31 : Effet d'un ester de sucre sur la diminution des produits
phytosanitaires sur le blé.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
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Des essais en chambre climatique ont été réalisés sur du blé tendre d'hiver
(variété GARCIA, Arvalis). Le blé a été semé dans des bacs de 1 mètre sur 1
mètre. Au stade dernière feuille étalé les blés ont été traités avec deux
fongicides commercialisés sous les noms Priaxor0 et Relmer0 Pro. Priaxor0
comprend deux matières actives : fluxapyroxad (appartenant à la famille des
SDHI) et pyraclostrobine (appartenant à la famille des strobilurines), et
Relmer0 Pro comprend la substance active metconazole (appartenant à la
famille des triazoles). Deux essais ont été réalisés :
- Témoin référence : 100% de la dose d'utilisation conseillée, c'est-à-dire
0,61/ha de Priaxor0 + 0,61/ha de Relmer0 Pro
- Traité : 25% de la dose d'utilisation conseillée, c'est-à-dire 0,151/ha
de
Priaxor0 + 0,151/ha de Relmer0 Pro, additionnés de 31/ha de sucrose
stéarate.
Les bacs ont ensuite été sortis de la chambre climatique et disposés à
.. proximité d'un champ présentant plus de 50% de pieds de blé atteints de
septoriose. Après 1 jour, les bacs sont remis en chambre climatique en
conditions contrôlées.
Les photos sont prises au début de l'épiaison et présentées dans la figure 30.
On constate que le nombre de pieds malades est largement supérieur sur le lot
témoin référence comparé au lot traité avec 80% des pieds atteints de
septoriose pour le contrôle contre moins de 20% pour le traité, et ce malgré
une diminution de 25% des produits phytosanitaires.
L'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention permet donc d'obtenir une
efficacité supérieure avec des concentrations en produits phytosanitaires
.. inférieures. Cette fonction selon l'invention permet donc à l'agriculteur
de
diminuer en concentration et/ou en fréquence la quantité de produits
phytosanitaires utilisée.
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WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
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Exemple 32 : Effet d'un ester de sucre sur la diminution des produits
phytosanitaires sur le maïs.
L'ester de sucre utilisé est le sucrose stéarate.
Des essais en chambre climatique ont été réalisés sur du maïs (P7043,
Pioneer). Le maïs é été semé dans des bacs de 1 mètre sur 1 mètre. Au stade
8-10 feuilles, les pieds de maïs ont été traités avec deux fongicides
commercialisés sous les noms Amistar0 et Cicero0. Amistar0 comprend la
substance active : azoxystrobine (appartenant à la famille des strobilurines),
et
CiceroO comprend deux substances actives : chlorothalonil (appartenant à la
famille des chloronitriles) et flutriafol (appartenant à la famille des
triazoles).
Deux essais ont été réalisés :
- Témoin référence : 100% de la dose d'utilisation conseillée, c'est-à-dire
11/ha d'Amistar0 + 2,51/ha de CiceroO
- Traité : 25% de la dose d'utilisation conseillée, c'est-à-dire 0,251/ha
d'Amistar0 + 0,61/ha de CiceroO, additionnés de 31/ha de sucrose
stéarate.
Les bacs ont ensuite été sortis de la chambre climatique et disposés à
proximité d'un champ présentant plus de 50% de pieds de maïs atteints
d'helminthosporiose. Après 1 jour, les bacs sont remis en chambre climatique
en conditions contrôlées.
Les photos des lots témoin référence et traité sont prises au stade 12-14
feuilles et présentés dans la figure 31.
On observe sur le lot témoin que 70% des pieds présentaient des taches
d'helminthosporiose, alors que pour le lot traité moins de 10% présentaient
des
taches d'helminthosporiose, et ce malgré une diminution de 25% des produits
phytosanitaires.
L'utilisation d'un ester de sucre selon l'invention permet donc d'obtenir une
efficacité supérieure avec des concentrations en produits phytosanitaires
CA 03072122 2020-02-05
WO 2019/030456 PCT/FR2018/052033
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inférieures. Cette fonction selon l'invention permet donc à l'agriculteur de
diminuer en concentration et/ou en fréquence la quantité de produits
phytosanitaires utilisés.
